發布時間：2023-08-18 17:32:31
序言：寫作是分享個人見解和探索未知領域的橋梁，我們為您精選了8篇的定性化學分析樣本，期待這些樣本能夠為您提供豐富的參考和啟發，請盡情閱讀。
【關鍵詞】瀕危植物；羊耳蒜；馴化；化學成分
【中圖分類號】R284.2【文獻標識碼】A【文章編號】1007-8517(2009)10-0003-02
The Endangered Plant Liparis Japonica’s Domestication and Qualitative Analysis to
its Chemical Constituent of Identification
LIUUYongfengLIUI Jieshu
(Medicine Hubei Institute for Nationalities, Enshi, Hubei,445000，China）
【Abstract】 Liparis japonica is the endangered species of wild protection plant provided by the provisions of the Convention on International Trade. The author has successfully domesticated this plant from wild state within two years. This article tells the process of domestication and has qualitative analysis of its chemical constituents of identification, in order to save this imminent danger plant, reserve resources for the species and play an active role for further scientific research.
【Keywords】endangered plants；Liparis japonica；chemical constituents；domestication.
1羊耳蒜基本情況
羊耳蒜屬蘭科，約250種，廣泛分布于全球熱帶與亞熱帶地區，少數種類也見于北溫帶，我國有45種，約有19種產臺灣，其余以西南為最多。由于生態的破壞和過度的采掘，在全球現已處于瀕危階段，現已被國際貿易公約規定的保護野生蘭科植物的一種。羊耳蒜，蘭科羊耳蘭屬植物羊耳蒜Liparis japonica（Miq.）Maxim.，以帶根全草入藥，夏秋采收，洗凈曬干。別名雞心七、珍珠七。生于溪邊、林下陰濕處。海拔在1400m～2000m之間。土家醫藥學認為全草有活血調經，止血，止痛，強心，鎮靜的功效。能治療崩漏，白帶，產后腹痛，外傷急救等病癥。[1]形態特征：多年生草本，全株無毛。假鱗莖卵球形，外被于膜質的白色鞘，下部具多數須根，如蒜頭狀，長6～12mm。基生葉2枚，對生，基部抱合而近對生；葉片狹卵形或卵狀橢圓形，長7～13cm，寬4～6cm，基部漸狹，先端鈍尖頭，花莖從中間抽出，高達20～40cm，下延成鞘狀抱莖（每年新發芽才有花莖）。花葶由2葉軸具翅；苞片膜質，鱗片狀，鈍頭，長1～1.5mm；萼片長卵狀披針形，長8～9mm，先端稍鈍；花淡綠色、黃色至紫色或紫色至綠色兩種，花瓣線形，與萼片等長，唇瓣較大，倒卵形，長8～13mm，不分裂，平坦，中部稍縊縮，其余花被片均較狹窄；蕊柱稍弓曲，先端翅鈍圓，基部膨大鼓出；子房細長，基部漸狹縮成柄，扭轉，柱頭長2.5mm。此花，不但形狀長得像熊蜂，并且還能發出一種相當于雌熊蜂分泌的外激素。雄熊蜂因此把羊耳蒜誤認為雌熊蜂，企圖同花進行交尾，結果碰上了花藥。這種移花接木，就把上面的花粉帶到了另一朵花上。蒴果綠色長倒卵狀披針形味苦，長達1～3cm，寬果梗長約1cm。花期5～7月，果期8～10月。羊耳蒜其馴化是指從山林與雜草叢中采掘回來于（2005年采掘），從野生到家養與場地、基質、光照、溫度、濕度、養分等方面的差異，需要一個較長時間的馴化過程才能適應。所謂馴化，是在羊耳蒜的栽培與養護過程中，采取一系列措施，使其逐漸適應新的生長環境。馴化時間一般3年，甚至更長。是通過其莖每年發新草，而一株發芽變成七八株時，馴化即告完成，以后進入正常養護。其主要馴化方法如下：分株與防腐從山上采回的羊耳蒜450余株，分六塊，每快75余株集在一起。栽種前剪去腐根與死葉病葉；但要注意不要碰傷葉芽。養護與管理：適當遮陽，保持通風。羊耳蒜怕強曬高溫，需涼爽通風的環境。一般安置在室外連用棚或涼爽通風的樹林下。合理攤肥，干濕相宜。蘭花施肥宜淡不宜濃。宜少不宜多。每隔4周可施由腐熟牛糞、萊麩等配制而成的專用肥水比例為1：10左右。如葉色發黑而尖端發焦，葉很快就壞掉，表示施肥過量，應停止施肥。施肥宜傍晚進行，第二天早上澆少許水。現已測定羊耳蒜的含水量為90，但羊耳蒜土忌過濕，澆水要隨季節變化和土干濕而定，保持一定濕潤即可，春秋季2～3天澆1次，夏季溫度高，水分蒸發快，又是羊耳蒜生長旺季，一般每日早晚各澆1次；冬季溫度低，水分消耗少，可5～7天澆一次。栽培應隨季節調節光照。早春、晚秋及整個冬季，應盡量多見陽光，初夏至早秋則需散光照射。成片栽培的，宜用遮光網遮光。遮光度為70％～80％，時間5～9月。夏季可用遮光、通風、灑水等措施，把溫度盡可能控制在適宜范維，特別是雨季要注意排水，在這期間是該植物能否栽種成功的關鍵幾個月，盡量避免受到強光照射。進入冬季，羊耳蒜在2008年冰雪災害下沒有壞掉，該植物具有很好的抗寒抗冷能力。防病與治蟲：有羊耳蒜苗在采掘時，即發現有葉斑病與介殼蟲，下山后溫度高，濕度大，更易受到病蟲的危害。羊耳蒜常見病害有葉斑病、腐爛病與白絹病。發病前噴保護類殺菌劑，進行防治；羊耳蒜的花主要蟲害有介殼蟲、蚜蟲、紅蜘蛛。防治介殼蟲，用40％樂果、或80％敵敵畏1000～1500倍液噴灑。蚜蟲用40％樂果、80％敵敵畏1500～2000倍液噴灑。紅蜘蛛則用40％三氯殺螨醇、35％殺螨特1000倍液噴灑。7～10天再噴一次，即有較好滅蟲效果。
2化學成分研究
現國內外還未見其對羊耳蒜的化學成分研究未見相關報道，[2]為此對羊耳蒜的中藥化學成分進行的研究。
2.1材料與儀器
2.1.1AW120型電子分析天平(新疆嘉穎科技有限公司，精度0．1 mg)；JY96-II超聲細胞粉碎機(寧波新芝生科技股份有限公司);旋轉蒸發器RE-52(上海亞榮生化儀器廠)；飛鶴離心機Anke TGL-16G等。
2.1.2羊耳蒜(購買于咸豐縣藥商，湖北民族學院醫學院劉杰書鑒定，為羊耳蒜)；乙醚、鹽酸等試劑均為優級純。
2.2方法與結果
2.2.1樣品制備將羊耳蒜干全草在60℃ 烘箱烘至衡重后用粉碎機粉碎120目-精密稱取干粉末2g置50mL燒杯中-加20 mL乙醚-置于超聲細胞粉碎機500w處提取15min提取液-用離心機離心除雜，離心液用旋轉蒸發器回收乙醇-得浸膏-加入石油醚除色素并將沉淀物-稀鹽酸溶解的樣品。
2.2.2結果分析樣品加碘化汞鉀試劑產生黃色沉淀樣品加雷氏鹽產生紅色沉淀。[3]由此分析羊耳蒜可能主要成分為生物堿。
3討論
本實驗現已對羊耳蒜進行馴化成功,現已對其進行組織培養過程中，為拯救瀕危植物、儲備物種資源作進一步的科學研究起到積極作用，將為以后開發新藥提供理論依據及資源。
參考文獻
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【關鍵詞】快速血糖儀；生化分析儀；血糖；差異性；影響因素
doi：10.3969/j.issn.1004-7484（s）.2014.01.168文章編號：1004-7484（2014）-01-0155-02
血糖升高是糖尿病、冠心病等多種疾病的危險因素，因此檢測血糖并及時給予控制，對降低糖尿病及相關心腦血管疾病的發病率有重要的意義。快速血糖儀檢測及生化分析儀檢測為臨床主要的檢測血糖方法。但是臨床研究顯示兩種檢測方法存在差異[1]，本文分別應用快速血糖儀及生化分析儀對我院內科住院的血糖進行觀察，總結如下：
1資料與方法
1.1一般資料隨機于我院內科2013年1月至2013年6月間住院的患者中抽取100例。其中，男68例，女32例；年齡31-82歲，平均（56.42±9.64）歲；因心血管疾病入院29例，呼吸道疾病入院26例，消化道疾病入院25例，內分泌疾病入院16例，其他內科疾病4例。
1.2儀器及試劑快速血糖儀應用強生血糖測試儀，選用強生原裝試紙。生化分析儀應用HITACHI7180生化分析儀，試劑為北京利德曼生產。所有儀器均1周進行一次校準。
1.3觀察方法抽取患者晨起空腹及早餐后2小時的肘靜脈血，立即送至化驗室，應用葡萄糖氧化酶法進行生化分析儀檢測。分別在兩次抽取肘靜脈血后，立即應用快速血糖儀進行指尖血糖測定。
1.4觀察指標
1.4.1血糖相關性分析分別對兩種檢測方法所測得的空腹血糖及早餐后2小時血糖進行相關性分析。
1.4.2血糖差異性比較分別對兩種檢測方法所檢測的空腹血糖及早餐后2小時血糖進行比較，分析其差異性。
1.4.3差異影響因素分析分別選取性別、年齡、血糖值作為分析因素，對導致血糖差異的因素進行分析。
1.5統計學方法統計學分析應用SPSS19.0軟件，所得血糖數據均應用均數±標準差表示，分別應用直線相關分析、t檢驗及多元回歸分析進行比較分析。
2結果
2.1血糖相關性分析兩種檢測方法所得的空腹血糖及早餐后2小時血糖均存在正向直線相關關系，見表1。
2.2血糖差異性比較經快速血糖儀測量的空腹血糖及早餐后2小時血糖分別明顯低于生化分析儀所測結果（P
2.3差異影響因素分析血糖值為導致兩種檢測方法測量空腹血糖及早餐后2小時血糖出現差異的影響因素，見表3。
3討論
血糖為血液中可溶于水的葡萄糖含量的濃度水平。而血液中所存在白細胞、紅細胞、血小板等多種物質的含水量不同，其含葡萄糖的含量也并不相同，因此當選取不同血液成分進行血糖檢測時，所得的血糖值也存在差異。因血液中紅細胞的含水量較少，故測量含有大量紅細胞的全血中血糖值較不含紅細胞的血清或血漿低。而快速血糖儀是測定指尖全血中葡萄糖濃度，因其為全血，故其中含有大量紅細胞。而生化分析測定血糖時，抽取的血液標本須先經離心去紅細胞處理。因此快速血糖儀測定的血糖值較生化分析儀低[2-4]。雖然生化分析儀測定的血糖結果相對于快速血糖儀更準確[5]，但是應用生化分析儀進行血糖檢測較為復雜，需要專用的檢驗設備，并需要專業的檢驗人員操作，不適于患者日常監測血糖使用。而快速血糖儀攜帶方便，患者及家屬在經過簡單培訓后即可自行操作，更適用于患者家中日常檢測使用。
本研究結果顯示，經快速血糖儀測量的空腹血糖及早餐后2小時血糖分別明顯低于生化分析儀所測結果（P
參考文獻
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[關鍵詞] 不穩定型心絞痛；氯吡格雷；強化抗血小板
[中圖分類號] R541.4[文獻標識碼]C [文章編號]1673-7210（2008）11（c）-045－02
不穩定型心絞痛（UAP）是臨床非ST段抬高的急性冠脈綜合征（ACS）的一種。近20年來，UAP占ACS的比例不斷提高，成為心血管病研究熱點和難點。它具有起病急，變化快，死亡率高但可救治的特點。本院心內科2005年6月～2007年11月住院治療的97例不穩定型心絞痛患者采取氯吡格雷強化抗血小板治療，取得了較好的療效。
1資料與方法
1.1一般資料
97例不穩定型心絞痛患者隨機分為觀察組48例和對照組49例。觀察組男33例，女15例。其中，惡化勞累型心絞痛20例，初發型心絞痛17例，靜息型心絞痛6例，梗死后心絞痛5例。對照組49例在年齡、性別、心絞痛類型、構成比上與觀察組比較，差異無統計學意義，具有可比性。所有病例均符合WHO冠心病心絞痛診斷標準與分型。
1.2治療方法
兩組患者均采用臥床休息，嚴密監護，給予ACS基本治療[1]，腸溶阿司匹林，硝酸脂類，β-受體阻滯劑或鈣離子拮抗劑，他汀類及抗凝藥物（以上藥物均掌握禁忌證）。觀察組除上述ACS基本治療外加用氯吡格雷（玻立維，賽諾菲制藥有限公司）300 mg頓服，2次/d，后改為25 mg/d，1次/d，連服3個月。兩組均常規監測凝血四項，血小板計數，肝腎功能，心肌酶譜，并觀察皮膚黏膜及內臟出血情況。
1.3療效判定
顯效：胸痛、胸悶消失，2周內未再發作，ST段恢復50%以復直立；有效：胸痛、胸悶緩解或消失，2周內仍有心絞痛發作，但頻率減少2/3或以上，ST段恢復50%以上，T波雙向或變淺；無效：胸痛、胸悶稍緩解或未緩解，仍反復發作ST-T未恢復，甚至加重或進展為急性心肌梗死（AMI）出現心力衰竭，導致死亡。
1.4統計學方法
計量資料采用均數±標準差(x±s)表示，均數間比較采用t檢驗；計數資料采用百分比表示，兩組間比較采用χ2檢驗。
2結果
2.1治療前后心絞痛發作情況比較
觀察組治療前后比較，差異有統計學意義（P＜0.01）；而治療組治療前后比較，差異無統計學意義（P＞0.05）；治療后觀察組心絞痛發作次數和持續時間較對照組明顯減少（P＜0.01）。見表1。
表1 治療前后心絞痛前后發作次數及持續時間比較（x±s）
2.2兩組療效比較
觀察組：顯效21例（43.7%），有效24例（50%），無效4例（8.16%）；無一例死亡，3例進展為AMI，無一例發展到皮膚黏膜出血及內臟出血，6例發生轉氨酶升高，但未超過正常值2倍，凝血四項對比正常。對照組：顯效16例（31.9%），有效22例（46.8%），無效9例（19.1%）；1例死亡，3例進展為AMI，1例背部皮膚點狀出血。觀察組總有效率（93.74%）優于對照組（80.85%）（P＜0.05）。
3討論
UAP介于穩定型心絞痛和急性心肌梗死之間。隨著對冠脈造影、尸解及動物實驗的大量研究，已證實發生UAP的關鍵因素為冠狀動脈粥樣硬化斑塊的纖維帽破裂，繼發血小板聚集與黏附增多，冠脈痙攣，血栓形成。冠狀動脈血管不完全阻塞，導致冠狀動脈血流減少，造成缺血性胸痛發作，如不積極治療易發生為急性心肌梗死[2]。因此，血小板聚集在冠狀動脈血栓的起始起關鍵作用。它主要有3個信號轉移途徑：磷酯酶C的激活；磷脂酶A2的活化引起花生四烯酸的水平增加；腺苷酸環化酶的抑制。重要的是不論通過何種途徑，最終是發生血小板聚集。所以干預任何一個環節都會抑制血小板黏附、活化和聚集，且多途徑阻斷血小板活化必將增加抗栓作用，防止血栓形成或延展。UAP治療除了抗凝、抗冠狀動脈痙攣、增加心肌供氧、血脂達標等措施外，抗血小板治療尤為重要，特別是纖維帽破裂早期。我們選用了阿司匹林和氯吡格雷。阿司匹林可以與環氧化酶（COX）部分絲氨酸殘基發生不可逆的乙酰化反應而使酶失活[3]，抑制花生四烯酸代謝，減少血栓素A2的產生，使血小板的功能受到抑制，并且這種抑制是不可逆的，作用是長久的。然而，血栓素僅是血小板活化的一條途徑，阿司匹林不能抑制血小板通過其他介質被活化。氯吡格雷能夠選擇性地與血小板表面腺苷酸環化酶偶聯的二磷酸腺苷（ADP）受體結合以不可逆地抑制血小板聚集過程，且干預花生四烯酸、凝血酶和血小板活化因子等多種途徑引起的血小板聚集，不影響阿司匹林阻滯的COX通道。因此兩者偶聯可增加抗栓療效，阻斷多途徑血小板活化。循證醫學證明：在阿司匹林治療的基礎上再阻斷其他途徑引起的血小板聚集將會顯著地提高療效，使患者受益。目前多主張強化抗血小板療法[4]。
所以，采用氯吡格雷強化在應用阿司匹林基礎上雙途徑抗血小板活化治療，證據充分，療效顯著，使用方便，副作用少，值得研究推廣。
[參考文獻]
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1材料與方法
1.1儀器及試劑 P680A LPG 高效液相色譜系統、ASI-100 自動進樣器、UVD170U 紫外檢測器，美國戴安公司;TL-18M 臺式高速冷凍離心機，上海市離心機械研究所有限公司;TG16-W 微量高速離心機，湖南湘儀實驗室儀器開發有限公司;SG8200HE 超聲波清洗機，鄭州南北儀器設備有限公司;BP211D 十萬分之一精密電子天平，德國賽多利斯公司。
1.2實驗動物 樣本采自廣東省廣州市番禺區，經廣州中醫藥大學李薇教授鑒定為鉅蚓科動物參環毛蚓Pheretima asperfillum(E.Perrier)。選擇體型健碩、活力較強、性成熟、體表具有明顯生殖環帶、平均濕質量約 14.1 g 的健康成蚓，經無菌超純水清洗后，放入鋪有濕潤滅菌濾紙的塑料箱中，在室溫(222)℃下，避光培養 48 h 以備用。
1.3標準溶液配制與樣品處理
1.3.1標準溶液配制 精密稱取肌苷標品 3.88 mg，次黃嘌呤標品 2.51 mg，分別置于 2 mL 量杯中，用 PBS緩沖液溶解并定容至 10 mL 的容量瓶，均稀釋為 500滋molL-1作為母液，置于 4 ℃冰箱中備用。
1.3.2參環毛蚓粗蛋白的制備 解剖活體參環毛蚓，去除腸道后剪取體壁組織用 PBS 緩沖液浸泡潤洗 3次，轉移至培養皿剪碎后用勻漿器研磨，以 0.1 molL-1pH7.4 的 PBS 緩沖液為溶劑，將組織液轉移至離心管，4℃ 12000 rmin-1離心 30 min，將提取液分裝，-20 ℃保存備用。以小牛血清蛋白(BSA)為標準品，采用 Bradford 法測定粗蛋白含量。
1.4色譜條件 采用 Ecosil C18-AQ 柱 (250 mm4.6mm，5滋m)，流速為 0.8 mLmin-1，柱溫為室溫，檢測波長為 254 nm。流動相 A 為 10 mmolL-1磷酸二氫銨緩沖液，用磷酸調 pH 至 4.5，B 為 10 %甲醇。采用梯度洗脫：0～10 min A-B(50∶50)，10～15 minA-B (20∶80)，15～25 min A-B (0∶100)，25～35min A-B(0∶100)。
2結果
2.1方法學考察結果
2.1.1方法專屬性 在優化的色譜條件下，肌苷峰型良好，與代謝產物分離良好。
2.1.2標準曲線的繪制與檢測限 取次黃嘌呤標準液，用 PBS 緩沖液稀釋成 0.5，2，4，5，10，15，20，40滋molL-1的系列標準液，取 10滋L 按色譜條件進行 HPLC 分析，測定次黃嘌呤含量(n=5)。以次黃嘌呤峰面積Y為縱坐標，次黃嘌呤濃度(X，滋molL-1)為橫坐標，繪制標準曲線。結果表明次黃嘌呤在0.5~40滋molL-1濃度范圍內線性關系良好，回歸方程為：Y=0.0653X-0.0394，r=0.9996。次黃嘌呤檢測限為 0.05滋molL-1(S/N3)。
2.2肌苷在參環毛蚓組織粗蛋白中的酶反應動力學
2.2.1蛋白濃度考察 為了考察參環毛蚓體壁組織酶反應體系中合適的蛋白濃度，以不同蛋白濃度(X)與產物次黃嘌呤的濃度增加量繪制曲線。結果表明樣品的蛋白濃度在 0～7.5 mgmL-1范圍內，與產物濃度變化量呈線性關系，因此在該濃度范圍內的廣地龍粗蛋白提取物可用于酶活性分析。
2.2.2孵育時間考察 為了考察適當的的孵育時間，以產物濃度與孵育時間繪制曲線，結果見圖 3。在0～30 min 的反應時間內，酶促反應呈線性上升，而30 min 后，酶活力基本穩定，說明酶促反應已完成，處于穩定狀態，故選用孵育時間 30 min 作為酶活力測定的時間。
3討論
在酶活性的檢測方法中，高效液相色譜法因其靈敏度高、選擇性好而應用廣泛，尤其是對目標成分的檢測能做到快速、準確、實時的特點，更受國內外學者的歡迎。本研究參考了文獻有關 HPLC 方法，并以此為基礎對流動相的比例、梯度洗脫條件進行了改進及優化，實現了底物與產物之間的良好分離。
1根據分析原理
化學分析：用物質的化學反應作為基本原理進行分析，這種方法有著悠久的歷史，是我們分析化學中的基本，是經典的分析方法。它通過物質的反應情況，來判定物質的化學組成部分。通過在化學反應中物質與生成物之間的數量關系來鑒別組分的相對含量。儀器分析：用物質的物理或化學性質為基本的分析方法，可以通過光化學、電化學、熱磁、聲等進行分析。使用儀器的話分析過程簡單。分析的結過的準確度也比較高，但在物質的微量、痕量方面的分析準確度較低。
2化學分析與儀器分析的共同點
這兩種分析方法都是可以定性或者定量的。化學分析法主要是作為含量相對來說高的分析方法，它的準確性很高，一般情況下可以到千分之幾，而儀器分析而且它的精確度不低，但是精密性很低，因此只可以監測出常量還有半微量的含量，一般要高于5%以上，作為一般的常量分析中很不使用。
3化學分析與儀器分析的差異
兩種方式的使用設置有不小的差別，化學分析普遍的監測被測分析物為常量或者是半微量，而且它的精確度不低，但是精密性很低，因此只可以監測出常量還有半微量的含量，監測微量成分的時候準確度很差乃至壓根監測不到；使用這樣的方法加以監測任務時需要它的誤差不可以高于百分之零點一。儀器分析經常是對微量甚至痕微量展開分析，它的精確性不高但是精密度很好，可以設定或定性的準確監測部分，但是誤差不小，通常都會高于百分之一。
4特點及兩種方法的關系
儀器分析：儀器分析經常是對微量甚至痕微量展開分析，儀器分析的使用比較快捷靈敏，樣品的需要量也很少，分析速度也很快。但它的精確性不高但是精密度很好，可以設定或定性的準確監測部分，但是誤差不小，通常都會高于百分之一。在這兩種分析方法中，儀器分析是建立在經典的化學分析的基礎上，基本的儀器分析方法需要的樣品之前的處理都是用化學分析的方法，有很多儀器在進行分析錢還要用化學分析的方法進行分離物質，儀器分析方法基本上可以作為相對的化學分析方法。大多數的分析儀器都有很高的靈敏度，但是儀器也有損壞不準確的適合，在現代社會，科技的進步速度越來越快，化學分析方法也慢慢變得更加現代化和智能化，從分析化學的可靠性和使用成本中來說，不能確切的說明哪種方法比哪種方法更好，化學分析有著合適的是使用范圍，它所需的工具價格也不昂貴，而儀器分析方法也不能離開化學分析的方法來進行改正，所以儀器分析是無法代替化學分析方法的。在分析儀器的過程中，要選擇合適的儀器進行配備是重要的問題。比如，某公司想要生產處高質量的產品，就要先建立分析實驗室，才能保障產品質量安全，現在有部分企業因為一些分析儀器價格比較高昂，貪圖小便宜，沒有經過分析研究就上市，這就導致了現代社會中經常出現的“食品安全事故”和“破壞環境”等問題。所以無論是從一些小的產品還是我們每天的衣食住行中，如果沒有這些分析，社會就無法進步，科學就無法向前發[4]。
5結束語
科爾沁區第一人民醫院檢驗科，內蒙古通遼 028000
[摘要] 目的 探討IQ200全自動尿沉渣分析儀、干化學分析儀、顯微鏡法臨床檢測中的應用效果。方法 回顧性分析該院382例住院患者的尿檢資料，對用IQ200全自動尿沉渣分析儀、H-100尿干化學分析儀和尿沉淀鏡檢的檢驗結果進行統計學處理。結果 顯微鏡紅細胞陰性率均高于全自動尿沉渣分析、尿干化學分析儀，差異有統計學意義（P＜0.05）；全自動尿沉渣分析儀檢查白細胞陰性率均低于尿干化學分析儀、顯微鏡檢查，差異有統計學意義（P＜0.05）。結論 尿沉渣分析儀和尿干化學分析儀檢查結果受到多種因素影響，可以將儀器法檢查和手工鏡檢相結合，從而提高尿液分析的檢驗質量。
[
關鍵詞 ] 尿液檢查；全自動尿沉渣分析儀；尿干化學分析儀；尿液沉渣顯微鏡檢查
[中圖分類號] R446.12
[文獻標識碼] A
[文章編號] 1672-5654（2014）12（c）-0023-02
隨著醫學檢驗技術的發展，自動化分析儀逐漸替代傳統的手工檢測。如IQ200全自動尿沉渣分析儀、H-100尿干化學分析儀就可在短時間內將尿液的多種化學指標進行定量分析[1]。該文對382例患者的尿液，分別采用UF- 50全自動尿沉渣分析儀、H-100尿干化學分析儀及尿沉淀鏡檢進行檢測，并對結果進行分析比較，現將結果報道如下。
1資料與方法
1.1一般資料
回顧分析該院住院的382例患者的尿檢資料，其中男202例，女180例，年齡25～66歲，平均年齡（43.3±7.8）歲。
1.2方法
1.2.1儀器與試劑IQ200全自動尿沉渣分析儀及配套試劑（日本Sysmex公司）；迪瑞H- 100尿干化學分析儀及尿液分析10項試紙條（長春迪瑞公司）；CX-2顯微鏡（Olympus公司）。
1.2.2 檢查方法收集住院患者的清潔尿液，取10 mL充分混勻后，分成兩管。第1管先在H- 100尿干化學分析儀上檢測，再在IQ200全自動尿沉渣分析儀上做尿沉渣檢查；第2管放入離心管在1500 r/min條件下離心5 min后，取尿沉渣液進行顯微鏡檢驗，每份標本均在2 h內檢測完畢。
1.2.3 正常參考值范圍全自動尿沉渣分析參考范圍：紅細胞0~17/uL，白細胞0～28/uL；鏡檢參考范圍：紅細胞0～3個/HP，白細胞0～5個/HP，超出參考范圍判定為陽性[2]。
1.3 統計方法
所有數據均采用spss 17.0統計學軟件進行統計分析，計數資料以百分率（%）表示，采用χ2檢驗，P＜0.05為差異有統計學意義。
2 結果
2.1三種檢查方法結果比較
紅細胞陰性率：顯微鏡檢查陰性率為85.34%，高于全自動尿沉渣分析、尿干化學分析儀，差異有統計學意義（P＜0.05），全自動尿沉渣分析與尿干化學分析儀比較差異無統計學意義（P＞0.05）；白細胞陰性率：全自動尿沉渣分析儀檢查陰性率為71.99%，顯著低于尿干化學分析儀、顯微鏡檢查，差異有統計學意義（P＜0.05），尿干化學分析儀與顯微鏡檢查比較差異無統計學意義（P＞0.05），見表1。
2.2 自動化分析假性結果
將鏡檢結果作為參考標準，如果全自動尿沉渣分析、尿干化學分析儀結果陽性而鏡檢結果為陰性，則視為假陽性；如果全自動尿沉渣分析、尿干化學分析儀結果陰性而鏡檢結果為陽性，則視為假陰性。全自動尿沉渣分析、尿干化學分析儀檢查紅細胞假陽性率、白細胞假陽性率比較，差異均有統計學意義（P＜0.05），見表2。
3 討論
IQ200全自動尿沉渣分析儀采用流式細胞和電阻抗技術進行檢測，通過對檢測熒光染色后尿沉渣中單個細胞的熒光強度、前后散射光強度及電阻抗的大小對尿液中的各種有形成分進行識別，可對紅細胞、白細胞等12種有形成分進行定量分析。此分析儀具有操作簡單、檢測速度快，重復性好等優點。尿干化學分析儀是通過檢測細胞內所含的化學物質來完成尿液檢查的，具有具有簡單、快速等特點。但是全自動尿沉渣分析、尿干化學分析儀容易受到各種因素的影響，從而造成假陽性、假陰性的出現[2]。通過表1可以看出，顯微鏡紅細胞陰性率均高于全自動尿沉渣分析、尿干化學分析儀，差異有統計學意義（P＜0.05）；全自動尿沉渣分析儀檢查白細胞陰性率均低于尿干化學分析儀、顯微鏡檢查，差異有統計學意義（P＜0.05）。與等[3]的結果基本一致。
在紅細胞檢測假陽性方面，全自動尿沉渣分析容易受到某些因素的干擾，如尿液草酸鈣結晶、尿酸鹽結晶、尿菌等影響而造成假陽性結果的檢出。紅細胞假陽性多由霉菌孢子、草酸鈣結晶、細菌和外來污染物引起。管型的假陽性常由黏液絲、霉菌絲及外來污染物等引起, 特別是當非晶型鹽類、細菌和類細菌微粒附著在黏液絲、菌絲及污染物上時，儀器易誤判定其為病理管型[3]。通過表2可以看出，全自動尿沉渣分析與鏡檢結果不符61例，其中假陽性58例，通過鏡檢證實，大量雜菌影響有13例，受霉菌影響有12例，受無定性尿酸鹽結晶或草酸鈣結晶影響有33例。因此，菌尿、結晶是全自動尿沉渣分析結果假陽性的主要原因。尿干化學分析儀有31例出現假陽性，6例受尿液pH偏高影響，17例受細菌過氧化物酶影響，8例受氧化劑影響。尿干化學分析儀檢測原理是利用肌紅蛋白或者游離血紅蛋白中的血紅素能夠催化過氧化氫釋放新生態氧，從而使色原氧化而顯色。如果尿液標本中含有類氧化酶物質，就會具有血紅蛋白相同的氧化色原作用，從而造成假陽性的發生[4]。全自動尿沉渣分析有3例假陰性，可能是紅細胞碎片言其熒光染色敏感度下降，造成熒光強度較弱，從而導致儀器漏檢。尿干化學分析儀有2例假陰性，主要原因是受尿液中含有大量維生素C，可能是由于維生素C競爭性抑制反應造成干化學隱血出現假陰性。
在白細胞檢測假陽性方面，全自動尿沉渣分析有30例假陽性，其中受菌尿影響有4例，受小圓上皮細胞影響有11例，受移形上皮、管型碎片、小管型有15例。而尿干化學分析儀有11例假陽性，分析尿干化學法檢出的71例假陽性患者的臨床資料，可發現患者多數患有腎炎、腎移植、上呼吸道感染等疾病，這可能是由于患者服用先鋒霉素或慶大霉素等抗生素致使尿液中淋巴細胞、高膽紅素和尿蛋白濃度升高引起的。因為尿白蛋白和尿膽紅素對白細胞檢測試紙墊的酯酶反應具有明顯的干擾，患有腎結核等疾病或進行器官移植患者的尿液中淋巴細胞含量升高，單純進行干化學法檢測就會出現假陽性結果[5]。全自動尿沉渣分析有2例白細胞假陰性，原因尚未明確，有待于進一步研究。尿干化學分析儀有6例白細胞假陰性，經鏡檢證實，均為單核細胞和/或淋巴細胞，主要原因是單核細胞、淋巴細胞胞質中沒有酯酶，因而出現漏檢。
綜上所述，盡管尿沉渣分析儀和尿干化學分析儀均能夠快速測定尿液當中的多項指標，且具有快速、簡便、可重復性好等優點，但導致漏檢的因素也較多。因而，在臨床當中可以將儀器法檢查和手工鏡檢相結合，從而提高尿液分析的檢驗質量，以便為臨床的診斷和治療提供快速、準確的診斷依據。
[
參考文獻]
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[4]王麗英.尿沉渣分析儀與尿干化學分析法、顯微鏡鏡檢聯合檢測尿白細胞、紅細胞的分析研究[J].吉林醫學,2010,13(4) :76-77.
綜合概述了我國與美國在纖維含量分析標準上存在的主要差異，提供給生產、貿易和檢測企業作為參考。
關鍵詞：纖維成分；美國；差異
美國是我國服裝類紡織品最主要的出口國，也是世界最大的紡織品消費市場，出口美國的產品必須要遵循美國本地的法令法規，特別針對纖維成分標簽，美國有嚴格的標簽法令，指導生產商和零售商進行正確的纖維標注。為了確保標簽的正確性，首先要使用正確的測試方法。本文針對我國和美國在纖維含量測試方法上存在的差異進行了比較和分析，給國內的生產、貿易企業提供了相關的信息，使其能根據產品的出口地區，正確地進行產品纖維含量的分析和標簽標注，滿足市場的要求。
1美國纖維含量測試標準的特點
美國紡織染色家和化學家協會（AATCC）在紡織測試標準領域非常具有權威性，由其編制的針對紡織品的AATCC測試方法涵蓋了紡織品纖維成分分析，色牢度試驗及織物水洗的物理性能等測試標準。AATCC標準是紡織產品進入美國市場采用最為廣泛的測試標準。
AATCC測試標準在纖維含量測試方面有兩個方法，AATCC 20標準為纖維定性分析法；AATCC 20A標準為纖維定量分析法。纖維定性分析中包括纖維縱向和橫向截面顯微鏡觀察法、燃燒法、密度法、溶解法、干捻法、沾色法、熔點法、紅外光譜法。AATCC 20A是纖維定量分析，包括顯微鏡分析法、化學溶解法和拆分法等。
2我國標準與美國標準之間的差異
我國對紡織產品的纖維含量測試是基于FZ/T 01057―2007《紡織纖維鑒別試驗方法》和GB/T 2910《紡織品 定量化學分析》。在此之外還有行業協會和相關機構針對特殊產品編制的方法標準，如FZ/T 01095―2002《紡織品 氨綸產品纖維含量試驗方法》、GB/T 16988―1997《特種動物纖維與綿羊毛混合物含量的測定》、FZ/T 30003―2009《麻棉混紡產品定量分析法》和FZ/T 01026―2009《定量化學分析 四組分纖維混合物》等。
2.1纖維定性分析方法
在所有檢測機構中對纖維鑒別使用最為廣泛的方法應該為顯微鏡觀察法和溶解法，針對特殊的纖維還會輔助采用燃燒法、紅外光譜法等，其他方法在實際檢測過程中由于精準性和可操作性等原因，使用較少。現簡單介紹幾個定性分析方法的過程，以及差異。
2.1.1顯微鏡觀察法
顯微鏡觀察法依靠生物顯微鏡作為工具，通過技術人員直接觀察纖維的縱向和橫向截面，從而初步判斷纖維的種類。一個經驗豐富的技術人員，可以通過顯微鏡判斷棉、麻、絲、毛等天然纖維，以及粘膠、氨綸等部分化學纖維。AATCC 20《纖維定性分析》標準和FZ/T 01057―2007《紡織纖維鑒別試驗方法》，除了對每一種類纖維的縱向和橫向外觀形態進行語言描述之外，還提供了大量的纖維圖片，給以更為直觀的認知。
2.1.2溶解法
我國的行業標準FZ/T 01057.4―2007《紡織纖維鑒別試驗方法溶解法》要求一律采用常溫（20℃~30℃）振蕩5min，或煮沸3min之后觀察樣品的溶解情況。而AATCC 20中溶解試驗針對不同纖維溶解的難易程度提供了3種溶解時間，分別為5min、10min、20min。溶解溫度除常溫20℃之外還有50℃、90℃和煮沸。
例如，二甲基甲酰胺法溶解確認試驗，要求在90℃時處理10min之后再觀察溶解現象。由于采用的溶解條件不同，某些特殊纖維的溶解現象會有所不同，檢測人員應細心觀察，注意區分。
2.1.3干捻法
AATCC 20中用干捻法來初步判斷麻類纖維。取平行纖維束，浸入水中，握住一端，使另一自由端對著觀察者，在電爐上使用熱空氣加熱， 在纖維干燥的過程中，亞麻和苧麻纖維為順時針旋轉，大麻和黃麻纖維為逆時針旋轉。
2.2纖維定量分析方法
GB/T 2910―2009中除個別方法外均等同采用ISO1833最新版的方法，與美國標準體系有較多差異。美國AATCC 20A標準中包含有含水率、非纖維物質去除、纖維含量拆分法、纖維含量化學分析法以及纖維含量顯微鏡分析法。而我國的纖維定量分析法根據方法的不同，有專門的標準與之對應。在進行國內纖維含量分析時要特別注意方法的選擇，GB/T 2910 為纖維定量化學分析法（附錄中提供有手工拆分法），GB/T 16988是針對動物纖維的顯微鏡分析法等等。
2.2.1纖維定量化學分析法
AATCC 20A中提供了8種化學分析法：100%丙酮法、20%鹽酸法、59.5%硫酸法、70%硫酸法、堿性次氯酸鈉法、90%甲酸法、二甲基甲酰胺法和二甲基乙酰胺法。而GB/T 2910提供了23種化學分析法，覆蓋了AATCC 20A所有測試方法。現從樣品準備、試劑選擇、測試過程、數據處理等方面，分析兩個方法體系之間的差異。
1）樣品準備（見表1）
雖然在取樣重量表述上有所不同，但是根據實際經驗，兩個標準的取樣要求均能滿足測試的代表性和準確性。在樣品稱重環節，AATCC明確要求樣品烘干至恒重，并對恒重有明確的要求。而GB/T 2910采用足夠長的烘干時間，也能達到實際恒重的要求，但AATCC 20A的可操作性更強些。
2）試劑選擇
在進行相同的纖維含量分析過程中，AATCC與我國標準在溶解過程中試劑的選擇有異同（見表 2）。
3）測試程序
兩個標準要求的測試操作程序不同，其中最有代表性的是粘膠纖維與棉的化學分析法（見表 3）。
由于粘膠和棉均屬于纖維素類纖維，在進行化學溶解時，兩種試劑都會損傷到棉纖維，操作程序中溫度、時間、振蕩等任何細小的不同都會影響到最終的結果。
4）數據處理
結果計算時，AATCC 20A只有針對粘膠纖維與棉混紡時引入了損失補償系數，其他所有的化學分析法沒有使用任何修正或補償系數。而GB/T 2910中對每類測試都提供了質量損失修正系數，報出的結果是測試數據結合相應的修正系數進行計算得出，確保了測試結果的精準。
我國標準明確規定，纖維重量百分含量應結合公定回潮率計算。雖然美國標準中沒有明確的要求，但檢測機構出具的報告還是結合公定回潮率進行計算的。由于兩國的標準體系中公定回潮率的不同，可能會導致結果的差異，所以在計算時一定要選擇正確的回潮率值。兩種典型的纖維回潮率比較見表 4。
2.2.2顯微鏡定量分析法
顯微鏡分析法的差異主要表現在結果計算上，如，AATCC 20A中羊毛羊絨的密度均為1.31，而我國規定羊毛的密度為1.31，羊絨的密度為1.30。在計算公式中，GB/T 16988是結合直徑的標準方差來進行面積計算，而AATCC 20A僅通過計算直徑來表述面積。
2.3多組分含量分析
我國GB/T 2910.2 部分為多組分成分含量分析，里面詳細介紹了4種溶解方案，并結合質量損失修正系數進行計算。而AATCC 20A中沒有如此詳細的計算和分析，在進行多組分含量分析過程中，要根據工作經驗慎重選擇溶解試劑、溶解順序，確保所選擇的試劑不會對殘余纖維造成損傷，導致數據準確性降低。
3結論
綜上所述，我國和美國在纖維成分分析方法上有較多的區別，檢測機構根據產品的出口地來選擇測試方法，進行檢測。企業要注意產品出口美國時檢測數據與國標數據之間的差異，根據檢測數據制定符合市場要求的纖維標簽。
【關鍵詞】 肉眼血尿 ；H-500尿液分析儀；干化學分析；假陽性
肉眼血尿是外觀能看到不同程度紅色渾濁的尿液， 其含血量每100 ml達到或超過0.1 ml。由于出血量的不同， 紅色深淺及渾濁程度不一。常見于泌尿生殖系統疾病， 如腎或尿路結石、結核、腫瘤等， 也見于如血液病、感染性疾病等某些全身性疾病。臨床上尋找病因常首先要做尿液常規的檢驗。日常工作中作者發現很多肉眼血尿樣本在進行干化學分析時部分項目會出現假陽性。為觀察血液含量對尿液干化學分析參數的干擾程度， 特做了相關模擬試驗， 即取正常體檢者抗凝血液加入到其尿檢干化學分析陰性的尿液中， 用血量從2 l～400 μl分別加到2 ml尿液中， 濃度為0.001～0.2， 按日常工作程序測定其離心前后干化學結果， 對比總結如下。
1 儀器與方法
1. 1 儀器和試劑 迪瑞 H-500尿液分析儀及配套尿液分析試紙條， 批號20110310。
1. 2 質控液 迪瑞尿液分析質控液， 批號20110106。
1. 3 方法 尿液分析儀按操作說明開機自檢通過后檢測質控液， 結果在控之后再檢測被檢樣本。將原尿液及配制后的尿樣共40份樣本混勻后按常規程序進行測定并記錄結果， 離心后輕吸上清液再測其干化學結果， 所有檢驗2h內完成。
2 結果
干化學分析的11項結果與血液濃度關系可分為以下四種情況。
2. 1 無影響 離心前后無變化的有尿膽元、膽紅素， 變化不明顯的有比重、酸堿度。
2. 1. 1 尿膽元 所測各管均為弱陽性， 說明血液含量對該項無影響。
2. 1. 2 膽紅素 各實驗管所測結果均為陰性， 此項也未受血液干擾。
2. 1. 3 比重 隨著血液含量增加， 會有0.005的微量變化。
2. 1. 4 酸堿度 血液含量對其影響不明顯， 可有 0.5的改變。
2. 2 假陽性 離心前陽性， 離心后陰性的有酮體、白細胞、葡萄糖、亞硝酸鹽、維生素C。
2. 2. 1 酮體 血液濃度為0.01～0.09時出現1+， 0.095～0.2時2+， 離心后全部陰性。
2. 2. 2 白細胞 血濃度為0.001～0.003時出現1+， 0.004～0.005時2+， 0.01～0.2為3+， 離心后轉為陰性。
2. 2. 3 葡萄糖 從血液濃度為0.08～0.2時出現弱陽性， 離心后轉為陰性。
2. 2. 4 亞硝酸鹽 血液濃度自0.01～0.2出現陽性， 離心后全為陰性。
2. 2. 5 維生素C 自血液濃度0.085開始～0.2出現0.6mmol/L， 離心后均為0。
2. 3 真陽性 離心前后均為陽性的有隱血， 其濃度從0.001～0.2均為3+， 且離心前后測定， 結果無改變。
2. 4 真陽性中的假象 蛋白質 因該項為混入的血液成分所致的陽性， 雖離心前后陽性程度變化不明顯也應視為假陽性。其實驗結果為血液濃度為0.001～0.002時出現微量， 0.003～0.005時1+， 0.01～0.2時3+， 離心前后結果無明顯改變。
